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    原代細(xì)胞培養(yǎng)和傳代培養(yǎng)的方法

    發(fā)布時(shí)間： 2021-07-07　　點(diǎn)擊次數(shù)： 1461次
    原代培養(yǎng)
    原理
    將動(dòng)物機(jī)體的各種組織從機(jī)體中取出，經(jīng)各種酶（常用胰蛋白酶）、螯合劑（常用 EDTA）或機(jī)械方法處理，分散成單細(xì)胞，置合適的培養(yǎng)基中培養(yǎng)，使細(xì)胞得以生存、生長和繁殖，這一過程稱原代培養(yǎng)。
    儀器、材料及試劑
    儀器：培養(yǎng)箱（調(diào)整至 37℃），培養(yǎng)瓶、青霉素瓶、小玻璃漏斗、平皿、吸管、移液管、紗布、手術(shù)器械、血球計(jì)數(shù)板、離心機(jī)、水浴箱（37℃）
    材料：動(dòng)物組織塊
    試劑：1640 培養(yǎng)基（含 20%小牛血清或胎牛血清），0.25%胰酶，Hank′s 液，碘酒
     
    初代消化培養(yǎng)法
    1. 準(zhǔn)備：取各種已消毒的培養(yǎng)用品置于凈化臺(tái)面，紫外線消毒 20 分鐘。開始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。
    2. 布局：點(diǎn)燃酒精燈，安裝吸管帽。
    3. 處理組織：把組織塊置于燒杯中，用 Hanks 液漂洗 2~3 次，去除血污；如懷疑組織可能污染，可先置于含有青鏈霉素的混合液中 30~60 分鐘。
    4. 剪切：用眼科剪把組織切成 2~3 毫米大小的塊，以便于消化。加入比組織塊總量多30~50 倍的胰蛋白酶液，然后一并倒入三角燒瓶中，結(jié)扎瓶口或塞以膠塞。
    5. 消化：或用恒溫水浴，或置于 37℃溫箱消化均可，消化中每隔 20 分鐘應(yīng)搖動(dòng)一次，如用電磁恒溫?cái)嚢杵飨?。消化時(shí)間依組織塊的大小和組織的硬度而定。
    6. 分離：在消化過程中見消化液發(fā)混濁時(shí)，可用吸管吸出少許消化液在鏡下觀察，如組織已分散成細(xì)胞團(tuán)或單個(gè)細(xì)胞，立即終止消化，隨即通過適宜不銹鋼篩，濾掉尚未充分消化開的組織塊。低速（500~1000 轉(zhuǎn)/分）離心消化液 5 分鐘，吸出上清，加入適量含有血清的培養(yǎng)液。
    7. 計(jì)數(shù)：用計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)，如細(xì)胞懸液細(xì)胞密度過大，再補(bǔ)加培養(yǎng)液調(diào)整后，分裝入培養(yǎng)瓶中。對(duì)大多數(shù)細(xì)胞來說，pH 要求在 7.2~7.4 范圍，培養(yǎng)液呈微紅色，如顏色偏黃，說明液體變酸，可用NaHCO3 調(diào)整。
    8. 培養(yǎng)：置于 36.5℃溫箱培養(yǎng)，如用 CO2 溫箱培養(yǎng)，瓶口需用紗布棉塞或螺旋帽堵塞，紗布塞易生霉菌，每次換液時(shí)需要換新塞。
     
    初代組織塊培養(yǎng)法
    1. 剪切：把組織小塊置于小燒杯或青霉素小瓶中，用 Hanks 液漂洗二三次以去掉表面血污，吸靜 Hanks 液，用眼科剪反復(fù)剪切 1mm3 塊為止。
    2. 擺布：用彎頭吸管吸取若干小塊，置于培養(yǎng)瓶中，用吸管彎頭把組織小塊擺布在培養(yǎng)瓶底部，小塊相互距離以 0.5cm 為宜，每一 25ml 培養(yǎng)瓶底可擺布 20~30 塊。
    3. 輕輕翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶，另瓶底向上，注意翻瓶時(shí)勿另組織小塊流動(dòng)，塞好瓶塞，置 36.5℃溫箱培養(yǎng) 2 小時(shí)左右（勿超過 4 小時(shí)），使小塊微干涸。
    4. 培養(yǎng)：從微箱中取出培養(yǎng)瓶，開塞，46 度斜持培養(yǎng)瓶，箱瓶底腳部輕輕注入培養(yǎng)液少許，然后緩緩再把培養(yǎng)瓶翻轉(zhuǎn)過來，讓培養(yǎng)液慢慢覆蓋附于瓶地上的組織小塊。置溫箱中靜止培養(yǎng)。待細(xì)胞從組織塊游出數(shù)量增多后。再補(bǔ)加培養(yǎng)液。
     
     
    傳代培養(yǎng)法
    原理
    細(xì)胞在培養(yǎng)瓶長成致密單層后，已基本上飽和，為使細(xì)胞能繼續(xù)生長，同時(shí)也將細(xì)胞數(shù)量擴(kuò)大，就必須進(jìn)行傳代（再培養(yǎng)）。 傳代培養(yǎng)也是一種將細(xì)胞種保存下去的方法。同時(shí)也是利用培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行各種實(shí)驗(yàn)的必經(jīng)過程。懸浮型細(xì)胞直接分瓶就可以，而貼壁細(xì)胞需經(jīng)消化后才能分瓶。
    材料和試劑
    1. 細(xì)胞：貼壁細(xì)胞株
    2. 試劑：0.25％胰酶、1640 培養(yǎng)基（含 10％小牛血清或胎牛血清）
    3. 儀器和器材：倒置顯微鏡，培養(yǎng)箱、培養(yǎng)瓶、吸管、廢液缸等
     
    操作步驟
    1. 吸除培養(yǎng)瓶內(nèi)舊培養(yǎng)液。
    2. 向瓶內(nèi)加入胰蛋白酶和 EDTA 混合液少許，以能覆滿瓶底為限。
    3. 置溫箱中 2~5 分鐘，當(dāng)發(fā)現(xiàn)細(xì)胞質(zhì)回縮，細(xì)胞間隙增大后，立即終止消化。
    4. 吸除消化液，向瓶內(nèi)注入 Hanks 液數(shù)毫升，輕輕轉(zhuǎn)動(dòng)培養(yǎng)瓶，把殘余消化液沖掉。注意加 Hanks 液沖洗細(xì)胞時(shí)，動(dòng)作要輕，以免把已松動(dòng)的細(xì)胞沖掉流失，如用胰蛋白酶液單獨(dú)消化，吸除胰蛋白酶液后，可不用 Hanks 液沖洗，直接加入培養(yǎng)液。
    5. 用吸管吸取營養(yǎng)液輕輕反復(fù)吹打瓶壁細(xì)胞，使之從瓶壁脫離形成細(xì)胞懸液。
    6. 計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)后，把細(xì)胞懸液分成等份分裝入數(shù)個(gè)培養(yǎng)瓶中，置溫箱中培養(yǎng)。
     
    無菌操作注意事項(xiàng)
    1. 操作前要洗手，進(jìn)入超凈臺(tái)后手要用 75%酒精或 0.2%新潔爾滅擦試。試劑等瓶口也要擦試。
    2. 點(diǎn)燃酒精燈，操作在火焰附近進(jìn)行，耐熱物品要經(jīng)常在火焰上燒灼，金屬器械燒灼時(shí)間不能太長，以免退火，并冷卻后才能夾取組織，吸取過營養(yǎng)液的用具不能再燒灼，以免燒焦形成碳膜。
    3. 操作動(dòng)作要準(zhǔn)確敏捷，但又不能太快，以防空氣流動(dòng)，增加污染機(jī)會(huì)。
    4. 不能用手觸已消毒器皿的工作部分，工作臺(tái)面上用品要布局合理。
    5. 瓶子開口后要盡量保持 45℃斜位。
    6. 吸溶液的吸管等不能混用。
     
     
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